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WGCNA는 정말 효과가 있을까 — 공개 단백체 데이터로 처음부터 끝까지 재 본 결과

CPTAC 신장암 종양 110개로 WGCNA 표준 흐름을 돌리고 다른 코호트에서 다시 확인했습니다. 모듈은 진짜였지만, 등급과 유의한 모듈 7개 중 같은 크기 무작위 묶음을 넘은 것은 2개였고 가장 센 모듈은 혈관 함량이었습니다.

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#WGCNA#공발현 네트워크#모듈 보존#허브 유전자#단백체#CPTAC#세포 구성#soft threshold#표본 수#재현성

WGCNA(가중 유전자 공발현 네트워크 분석)는 오믹스 논문에서 가장 많이 쓰이는 방법 가운데 하나입니다. 흔한 흐름은 「모듈을 찾고 → 형질과 엮인 모듈을 고르고 → 그 안의 허브 유전자를 핵심 표적으로 제시」하는 것입니다. 저희는 이 흐름을 공개 데이터로 처음부터 끝까지 돌리면서, 중간 선택값을 바꾸고, 표본을 줄이고, 다른 코호트에서 다시 확인하고, 무작위 묶음과 비교했습니다. 결론은 **「함께 움직이는 덩어리를 찾는 데는 잘 된다. 그러나 형질을 설명하는 핵심 유전자를 찾는 데는 생각보다 약하다」**입니다. 사용한 자료는 공개 데이터(CPTAC 신장암 · TJ-RCC)와 공개 논문뿐입니다. (고객 자료는 쓰지 않았습니다.) (English: Does WGCNA Really Work?)


같은 무리로 다니는 학생들

학교에서 누가 누구와 같이 다니는지 기록해 「무리」를 나눈다고 해 보겠습니다. 무리는 분명히 나옵니다. 그런데 그 무리가 「친해서」 생긴 것일까요?

  • 같은 동네라 같은 버스를 타서 늘 같이 다니는 것일 수도 있고,
  • 같은 동아리라서 일 수도 있고,
  • 정말 마음이 맞아서일 수도 있습니다.

그리고 「성적이 좋은 무리」를 찾았다고 해도, 그 무리의 「가장 인기 많은 학생」이 성적을 올린 사람이라는 보장은 없습니다.

WGCNA 의 모듈과 허브도 같습니다. 모듈은 확실히 나옵니다. 문제는 그 모듈이 무엇 때문에 생겼는지, 그리고 형질과의 연관이 「아무 묶음보다 나은지」입니다.


무엇을 했나

항목내용
발견 코호트CPTAC 신장암(투명세포형) 종양 110개 단백체 · 병리 등급(grade) G1 7 · G2 51 · G3 41 · G4 11
재현 코호트TJ-RCC 종양 100개 단백체 (다른 나라 · 다른 기기 · 다른 처리)
단백질두 코호트 공통 · 결측 10% 이하(TJ-RCC 의 값 0 은 결측으로 처리) 중 발견 코호트 분산 상위 3,000개
기본 설정모듈 자르기 값은 WGCNA 튜토리얼 그대로(minModuleSize 30 · deepSplit 2 · mergeCutHeight 0.25), 망은 signed · power 10(scale-free 적합 R² 0.80 을 처음 넘는 값). 튜토리얼 자체는 unsigned · power 6 입니다.
실험① 선택값 하나씩 바꾸기 ② 표본 줄이기 ③ 다른 코호트·다른 분자층에서 다시 보기 ④ 같은 크기 무작위 묶음과 비교 ⑤ 세포 표지로 모듈 정체 확인 ⑥ 예측 성능 비교

종양만 쓴 이유가 있습니다. 종양과 정상을 섞으면 모듈이 「종양 대 정상」 차이로 쏠립니다. 재현 코호트에 정상을 넣어(TJ-RCC 종양 100 + 정상 50) 같은 방법으로 돌려 보니 가장 큰 두 모듈이 종양-정상과 r −0.82 · 0.74 였고, 그 안의 47.5% · 27.5% 가 이미 차등 단백질이었습니다. 군 차이가 큰 설계에서 WGCNA 는 차등 분석을 한 번 더 하는 것에 가깝습니다.


1. 좋은 소식 — 모듈은 진짜 「덩어리」다

  • 모듈 15개 모두 GO 생물학적 과정이 유의했습니다. 같은 크기의 무작위 단백질 묶음 200개에서는 5% 만 유의했습니다.
  • 미토콘드리아 호흡 · 리보솜 · RNA 스플라이싱 · 보체 · 세포외기질처럼 「같이 만들어지고 같이 일하는」 묶음이 깨끗하게 갈렸습니다.
  • 다른 나라 · 다른 기기에서 잰 코호트에서도 15개 중 12개가 크기를 맞춘 무작위 모듈보다 높게 보존됐습니다.

WGCNA 가 데이터의 구조를 보여 주는 도구로는 제 역할을 한다는 뜻입니다.


2. 중간 선택값 — 어디서 결과가 갈리나

선택값 민감도

막대는 「기준 실행과 같은 단백질을 같은 모듈에 넣었나」의 일치도(ARI, 1 = 같음 · 0 = 우연 수준)입니다. 빨간 막대는 「등급과 가장 센 모듈」이 다른 모듈로 바뀐 경우 — 즉 논문의 결론 문장이 달라지는 경우입니다.

  • soft power — 같은 그래프(튜토리얼의 power 후보 1~10, 이후 20까지 짝수)에서 「scale-free 적합 R²」 기준선을 0.80 으로 그으면 power 10, 0.85 면 18, 0.90 이면 20 이 됩니다. 패키지의 자동 추천은 18 을 줍니다. (power 를 정수마다 다 보면 17 · 19 입니다.) power 18 에서는 평균 연결 수가 약 2 로 떨어져 단백질의 43% 가 어느 모듈에도 들지 못했습니다. 반대로 power 4 · 6 으로 낮추면 「등급과 가장 센 모듈」 자체가 다른 모듈로 바뀌었습니다.
  • 망 종류 — unsigned(관례대로 power 6)로 바꾸면 일치도 0.35, signed hybrid(power 10)는 0.09 까지 떨어졌습니다. 사실상 다른 분석입니다.
  • 입력 단백질 수 — 분산 상위 1,000개만 쓰면 「등급 모듈」이 면역 모듈로, 2,000개면 ER·골지 모듈로 바뀌었습니다.
  • 반대로 모듈을 얼마나 잘게 자를지(minModuleSize · deepSplit · mergeCutHeight)는 덜 민감했습니다. 모듈 수는 바뀌어도 큰 덩어리는 유지됐습니다.

scale-free 를 기준으로 power 를 고르는 근거 자체도 약합니다. 실제 망 928개를 조사한 연구에서 scale-free 의 가장 강한 증거 수준을 보인 것은 4% 였습니다 [1]. RNA-seq 공발현 망으로 유전자 기능(GO)을 맞히는 평가에서는 soft threshold 가 단순 상관보다 오히려 성능을 낮췄습니다 [2]:

"Also, the WGCNA soft thresholding acts in a similar fashion, lowering performance (average AUROC = 0.55)."

정리하면 「입력 집합 · power · 망 종류」는 결과를 바꿉니다. 이 셋은 값과 이유를 적고, 두세 값으로 돌려 결론이 유지되는지 보여야 합니다.


3. 표본 수 — 몇 개부터 믿을 수 있나

110개 중 n 개를 뽑아 20번씩 다시 돌렸습니다.

표본 수전체 결과와 일치도(ARI)등급과 가장 센 상관「등급 모듈 발견」 보고율 (p < 0.05)
150.190.6675%
200.240.5995%
300.290.5790%
600.430.47100%
800.480.49100%

(전체 110개에서의 가장 센 상관 = 0.46)

표본이 15개면 모듈 배정은 거의 다른 결과인데, 상관은 0.46 → 0.66 으로 부풀려지고, 그런데도 4번 중 3번은 「등급과 엮인 모듈을 찾았다」고 보고하게 됩니다. 작은 표본에서 「가장 센 것」을 고르면 생기는 승자의 저주입니다. 패키지 저자들의 권고도 「15개 미만은 하지 말고, 가능하면 20개 이상」입니다 [3].


4. 형질과 엮인 모듈 — 무작위 묶음과 비교해 보면

무작위 대조

교과서 방식(모듈 대표값과 등급의 상관 + p 값)으로는 7개 모듈이 등급과 유의했습니다.

그런데 같은 크기의 무작위 단백질 묶음을 1,000번 뽑아 같은 계산을 하면, 그것도 등급과 |r| 0.30 쯤은 나옵니다. 등급이 데이터의 큰 축 중 하나라서, 아무 단백질이나 묶어 평균을 내도 그 축을 일부 잡기 때문입니다.

이 무작위 기준을 넘은 모듈은 2개뿐이었습니다(회색 막대 = 무작위 묶음의 95% 범위).

모듈-형질 p 값은 「상관이 0 이 아니다」를 검정할 뿐, 「아무 묶음보다 낫다」를 검정하지 않습니다.


5. 그 모듈의 정체 — 혈관 함량

세포 표지

등급과 가장 센 모듈(r −0.46)의 허브는 RASIP1 · CDH13 · PLVAP … 였습니다. 모듈을 보지 않고 고른 표준 혈관내피 표지(PECAM1 · VWF · CDH5 · ENG · EMCN · ESAM)의 점수와 비교하니 r 0.90 이었습니다. 이 가운데 4개는 모듈에도 들어 있지만, 모듈에서 빼고 다시 계산해도 결과는 같았습니다. 혈관내피 점수로 보정하면 등급 상관은 −0.46 → −0.21 로 줄었습니다(여전히 p ≈ 0.03 이라 「사라졌다」가 아니라 「줄었다」입니다).

즉 「등급이 높을수록 이 모듈이 낮다」는 사실이지만, 그것은 종양세포 안의 조절 변화라기보다 조직 속 혈관 비율의 차이에 가깝습니다.

이것은 이 데이터만의 일이 아닙니다. 모듈 15개 중 5개가 세포·혈액 함량(면역 · 혈관 · 기질 · 적혈구 · 혈장)이었고, 뇌와 혈액 전사체(RNA)를 본 연구는 이렇게 결론 냈습니다 [4]:

"Our conclusion is that the dominant coexpression signal in brain, blood, and, likely, other complex tissues can be attributed to cellular compositional effects, rather than intra-cell-type regulatory relationships."

단백체에서는 하나가 더 있습니다. 혈장 단백 모듈과 적혈구 모듈은 같은 환자의 RNA 로는 다시 나오지 않았습니다. 그 조직이 만든 것이 아니라 혈액에서 들어온 단백질이기 때문입니다. 이런 모듈을 「조절 프로그램」으로 해석하면 틀립니다.


6. 모듈 보존 점수의 함정

보존

모듈이 다른 데이터에서도 있는지 보는 표준 지표(Zsummary)에는 널리 쓰이는 기준이 있습니다 [5]:

"…if [Zsummary > 10] there is strong evidence that the module is preserved; if [2 < Zsummary < 10] there is weak to moderate evidence of preservation; if [Zsummary < 2], there is no evidence that the module preserved."

그런데 저희가 모듈 이름표를 단백질 사이에서 섞어 크기만 같은 무작위 모듈을 만들어 넣어 보니, 15개 중 12개가 Z 2 이상(최대 6.1)이 나왔습니다. 무작위 1,000개 묶음은 9.1 이었습니다. 단백질 이름을 섞은 음성 대조는 −1.1 ~ 1.3 으로 도구 자체는 정상이었습니다.

같은 논문도 Z 값이 모듈 크기에 따라 커진다고 밝히고 있습니다 [5]. 「2~10 = 중간 보존」 구간에는 무작위 묶음도 들어옵니다. 크기를 맞춘 무작위 모듈을 나란히 보여 줘야 합니다.


7. 허브 유전자와 예측

허브는 안정적이지만, 중요하다는 뜻은 아닙니다. 표본을 30개로 줄였을 때 허브 10개 중 6개가 다시 나왔습니다(등급과 상관이 가장 큰 단백질 10개는 1개). 허브는 「모듈 평균과 가장 비슷하게 움직이는 것」이라 평균처럼 잡음이 줄기 때문입니다. 하지만 위의 혈관 모듈 허브는 그냥 혈관 표지였습니다.

WGCNA 를 만든 두 사람도 이렇게 썼습니다 [6]:

"While there is an ongoing debate in the literature regarding the importance of hub genes, it is fair to say hubs are often not important."

바로 다음 문장에서 저자들은 망 전체의 허브 대신 모듈 안의 허브에 집중해야 한다고 주장합니다. 이 글에서 본 허브가 바로 그 모듈 안 허브입니다.

"…while network methods may be preferable when learning about biology, standard marginal meta-analysis methods may be better suited for selecting candidate biomarkers."

예측에서도 모듈이 더 낫지 않았습니다. 고등급(G3·4) 예측을 교차검증으로 비교하니(AUC) 등급 상관 상위 단백질 50개 점수 0.73 · 주성분 15개 0.72 · 모듈 15개 0.70 이었습니다. 모듈은 「해석하기 쉬운 주성분」이지 「더 강한 주성분」이 아닙니다. 42개 방법을 비교한 벤치마크에서도 알려진 조절 모듈을 가장 잘 찾은 것은 분해(ICA) 계열이었습니다 [7]. 공정하게 덧붙이면, 같은 벤치마크에서 WGCNA 는 군집 방법 가운데서는 상위권이었습니다.


8. 그래서 저희는

  • 표본이 20개 미만이면 WGCNA 를 권하지 않습니다. 20~30 은 구조를 살펴보는 용도로만, 모듈-형질 결론은 30개 이상에서 씁니다.
  • 종양/정상처럼 군 차이가 큰 설계는 군 안에서 따로 분석합니다.
  • power · 망 종류 · 입력 집합은 값과 이유를 적고, 두세 값으로 다시 돌려 결론이 유지되는지 함께 보여 드립니다.
  • 모듈마다 GO 와 함께 세포·혈액 표지와의 상관을 붙입니다. 혈장·적혈구 모듈은 따로 표시합니다.
  • 모듈-형질 연관에는 같은 크기 무작위 묶음과의 비교를, 보존 점수에는 크기를 맞춘 무작위 모듈을 나란히 붙입니다.
  • 허브는 「후보」로만 드립니다.

마무리

WGCNA 는 「데이터 속에 어떤 덩어리가 있나」를 보는 데는 좋은 지도입니다. 세포 구성이나 혈액 혼입, 배치 같은 큰 축을 한눈에 보여 주고, 수천 개 변수를 수십 개 점수로 줄여 줍니다.

그러나 지도에 선이 그어졌다고 길이 난 것은 아닙니다. 모듈이 형질과 엮였다면 「아무 묶음보다 나은가」, 그리고 **「세포 구성 때문은 아닌가」**를 먼저 물어야 합니다. 그 두 질문을 통과한 뒤에야 허브는 「핵심」이 아니라 「검증할 후보」가 됩니다.

재현하기

wgcna-cptac-ccrcc 는 공개 자료(약 48MB)를 내려받아 핵심 숫자를 약 4분 30초 만에 다시 계산합니다. 모듈 수, 등급 유의 모듈 7개 중 무작위를 넘는 2개, 혈관 모듈과 그 보정, AUC 세 개입니다. 원래 분석과 따로, 위에 적은 설정만 보고 새로 짠 코드이며 숫자는 소수 둘째 자리까지 다시 나왔습니다(R 4.3.3, WGCNA 1.74). 「유의 모듈 7개」가 전처리에 따라 달라진다는 것도 함께 보여 줍니다. TJ-RCC 의 0 을 값으로 두면 3개, CPTAC 만으로 거르면 2개입니다. 어느 경우든 혈관 모듈이 가장 세고, 무작위를 넘는 모듈은 2~3개였습니다. GO · 보존 점수 · 표본 줄이기 표 · 선택값 막대는 다시 돌리지 않았습니다.


참고문헌

  1. Broido AD, Clauset A. Scale-free networks are rare. Nature Communications 2019;10:1017. doi:10.1038/s41467-019-08746-5
  2. Ballouz S, Verleyen W, Gillis J. Guidance for RNA-seq co-expression network construction and analysis: safety in numbers. Bioinformatics 2015;31(13):2123–2130. doi:10.1093/bioinformatics/btv118
  3. Langfelder P, Horvath S. WGCNA package: Frequently Asked Questions. (웹 문서, 2017-12 갱신) https://horvath.genetics.ucla.edu/html/CoexpressionNetwork/Rpackages/WGCNA/faq.html (보관본 · 현재 원 사이트는 인증서 경고가 뜹니다)
  4. Farahbod M, Pavlidis P. Untangling the effects of cellular composition on coexpression analysis. Genome Research 2020;30(6):849–859. doi:10.1101/gr.256735.119
  5. Langfelder P, Luo R, Oldham MC, Horvath S. Is my network module preserved and reproducible? PLoS Computational Biology 2011;7(1):e1001057. doi:10.1371/journal.pcbi.1001057
  6. Langfelder P, Mischel PS, Horvath S. When is hub gene selection better than standard meta-analysis? PLoS ONE 2013;8(4):e61505. doi:10.1371/journal.pone.0061505
  7. Saelens W, Cannoodt R, Saeys Y. A comprehensive evaluation of module detection methods for gene expression data. Nature Communications 2018;9:1090. doi:10.1038/s41467-018-03424-4

인용한 문장은 모두 해당 논문·문서 원문에서 확인한 것입니다([4]의 인용은 초록). 자료: CPTAC 투명세포 신장암 단백체(Clark DJ et al. Cell 2019;179(4):964–983.e31, doi:10.1016/j.cell.2019.10.007 · LinkedOmics 처리본) · TJ-RCC(Hu J et al. Nature Genetics 2024;56(3):442–457, doi:10.1038/s41588-024-01662-5 · Zenodo 8063124, CC-BY-4.0). 도구: R WGCNA 1.73. 형질은 병리 등급 하나를 중심으로 봤고, 세포 표지 점수는 표지 4~7개 평균입니다. 다른 조직 · 대사체 · 다른 형질에서 같은 숫자가 나온다고 단정할 수 없습니다.

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